Friday 13 December 2013

        Fluorescent Antibody Technique (FAT) Fluorescent Antibody Technique (FAT) untuk penggunaan didalam mikrobiologi telah diperlihatkan pertama kali oleh Coons, at all pada tahun 1942. sebelumnya telah diperkenelkan penandaan protein antibodi dengan zat warna yang dapat berfluoresensi. Fluoresensi merupakan pemancaran sinar oleh atom atau molekul setelah terlebih dahulu disinari. Zat warna yang dapat befluoesensi disebut fluorokrom. Pada dasarnya teknik fluoresen antibodi ini merupakan kombinasi cara-cara imunologis dan pewarnaan. Adanya antigen akan diperlihatkan dengan perantaraan antibodi yang telah disenyawakan dengan fluorkrom.
Anjing, salah satu hewan penular rabies

        Prinsip dari uji ini adalah terbentuknya ikatan antara antigen (virus rabies) dengan spesifik antibodi virus rabies yang telah dikonjugasi dengan zat fluorescen sehingga tampak agregat yang berpendar hijau (fluorescensi) pada sampel yang diamati dengan menggunakan mikroskop flurorescent. Organ target virus penyebab rabies adalah jaringan sistem syarat pusat otak, khususnya cerebellum, hipokampus, thalamus, cereberal cortex dan medulla oblongata.  Hewan yang menunjukkan gejala klinis rabies atau mati akibat penyakit rabies, banyak ditemukan antigen virus rabies di dalam air liur, air mata dan jaringan otak.  Dalam otak, antigen virus rabies terdapat dalam jumlah yang sangat banyak terutama pada thalamus, pons dan medulla. Organ lain seperti glandula salivarius memberikan sensitifitas dan spesifisitas yang bervariasi. Jaringan yang direkomendasikan untuk dikoleksi dan diuji adalah pool dari jaringan otak dan batang otak (brain stem).


 Alat -alat yang diperlukan :
a. Laminar flow cabinet,
b. Mikroskop fluoresensi (merek Olympus atau Nikon)
c. Gunting dan pinset
d. Gelas obyek atau gelas slide
e. Gelas penutup
f. Inkubator dengan suhu 37 derajat Celcius
g. Cawan petri
h. Kulkas
i. Gelas beaier
j. Pipet pasteus spuit 1 ml

Reagensia dan bahan-bahan biologik:
a. Larutan PBS pH 7,4 tanpa Ca2+ dan Mg2+, disimpan pada suhu 4°C,
b. Aseton (high grade) dingin,
c. Aqudes,
d. Larutan evans blue 1:2000
e. Buffer gliserin 50% (mounting media)
f. Konjugat anti rabies (Biored), antibodi spesifik terhadap virus rabies yang dilabeli FITC,
g. Kontrol otak positif rabies,
h. Kontrol otak negatif rabies.
Pembacaan hasil slide ulas tekan otak HPR pada mikroskop fluresen

 Prosedur  kerja dan uji:
1. Buat preparat slide tekan :
    a. Buat lingkaran pada gelas obyek yang akan digunakan untuk membuat preparat ulas tekan.
    b. Tulis nomor atau kode spesimen
    c. Letakkan sampel pada cawan petri dan potong bagian otak (hipokampus, medulla, pons) dan
        letakkan pada kertas minyak.
    e. Tempelkan gelas obyek pada potongan otak, dimulai dari lingkaran yang dekat dengan nomor
        spesimen, lalu tekan yang kuat. Lakukan hal yang sama pada  lingkaran yang satunya.
        Pindahkan pada kertas towel dan tekan yang sama di atas beberapa kali agar mendapatkan
        preparat tekan yang tipis. Preparat diangin-anginkan sejenak.
    f. Buat sekurang-kurangnya 4 slide preparat; 2 preparat ulas (smear) dan 2 preparat tekan (gerusan)
       dari sampel otak segar (mengandung dasar cerebellum, hippocampus, cortex dan medulla
       oblongata) setipis    mungkin pada gelas slide. Disamping itu buat slide preparat dari otak yang
       mengandung virus rabies dan otak  yang tidak mengandung virus rabies sebagai
       pembanding/kontrol positif dan negatif.
2. Bila sampel otak telah diawetkan dalam 50% gliserin – PBS, maka preparat dicuci beberapa kali
    dengan  PBS untuk menghilangkan gliserol yang dapat menutupi fluoresensi
3. Preparat kemudian dikeringkan dengan cara dihembuskan angin (diangin-angin), lalu dimasukkan
    ke  dalam coplin jar (kontainer) yang mengandung aseton dingin (preparat terendam) dan simpan       di dalam  freezer -15 °C sampai -20  °C selama 30 menit.
4. Preparat kemudian diangkat dari rendaman aseton dingin lalu dikeringkan (diangin-angin),
5. Susun preparat dalam cawan petri besar yang telah dialasi kertas saring basah (untuk menjaga
    kelembapan.
6. Teteskan konjugat anti rabies FITC sebanyak 1-2 tetes pada lokasi yang didemarkasi. Usahakan
    cairan  konjugat tersebar secara merata menutupi lokasi demarkasi.
7. Tempatkan slide preparat tadi secara horisontal pada rak yang datar di atas baki yang cukup
     mengandung  air, baki ditutup dan lalu ditempatkan di dalam inkubator dengan suhu 37 °C selama
    30 menit.
    Untuk rekomendasi: untuk memperoleh hasil yang lebih kontras dan lebih baik flourescentnya
    serta mendeteksi sampel yang positif lemah, dianjurkan konjuget Biored dicampur dengan Evans
    Blue 1% dengan perbandingan 0,1 ml Evans Blue 1% dicampurkan dengan 2 ml konjuget Biorad.
8. Setelah selesai masa inkubasi, slide preparat kemudian di rendam dalam PBS pH 7,4 selama 5
    menit sebanyak 2 (dua) kali,
9. Slide preparat kemudian dipindahkan dan dikeringkan dengan cara menempatkannya secara
    vertikal.
10. Setelah slide preparat kering, tambahkan 1 tetes 50% gliserin bufer pH 7,6 di atasnya, tutup
      dengan  coverslips pada lokasi yang akan diamati, lalu amati di bawah mikroskop fluorescen
      dengan perbesaran 40 x.
11. Slide preparat kontrol positif dan slide preparat sampel yang mengandung virus rabies akan
      berwarna  fluoresen hijau terang (apple green) atau struktur hijau-kekuningan dengan ukuran
      yang bervariasi mulai  dari ukuran kecil ibarat seperti butiran pasir sampai ukuran besar Negri
      Bodies. Tidak terlihat adanya warna  fluorescen hijau terang (apple green) atau struktur hijau-
      kekuningan pada slide kontrol negatif.
12. Sampel dinyatakan positif rabies jika ditemukan sel yang berpendar hijau (berwarna fluoresen
      hijau  terang (apple green) atau struktur hijau kekuningan), seperti dijumpai pada slide kontrol
      positif tetapi tidak  dijumpai gambaran tadi pada slide kontrol negatif.
Hasil positif rabies pada mikroskop flouresen


Friday 2 November 2012

Cara Pengambilan Sampel Otak Anjing

      Pengambilan sampel otak anjing dilakukan untuk mendapatkan bagian dari otak (dasar cerebellum, hippocampus, cortex dan medulla oblongata) sebagai bahan uji untuk pemeriksaan adanya virus rabies pada hewan tersangka. Otak anjing diambil dengan cara sebagai berikut: kepala anjing yang telah mati dipotong dengan menggunakan pisau tajam pada bagian lehernya (antara tulang leher pertama dengan tulang kepala) sehingga terlihat foramen occipitale. Dengan menggunakan sedotan limun (straw) berdiameter 5 mm, sedotan limun tadi ditusukkan (sambil diputar-putar) ke kepala melalui foramen occipitale tadi dengan arah ke bagian mata. Selanjutnya sedotan limun ditarik kembali keluar secara perlahan. Pada ujung sedotan limun tadi akan diperoleh bagian jaringan jaringan otak (dasar cerebellum, hippocampus, cortex dan medulla oblongata).

Wednesday 2 November 2011

Cara Pengiriman Sampel Otak Anjing Untuk Pemeriksaan FAT Terhadap Rabies


        Bila pengujian serum harus diperiksa pada laboratorium penguji yang lokasinya cukup jauh, maka sampel otak harus dikirim dalam keadaan dingin dan aman agar sampel otak tidak rusak dan tidak tercecer mengkontaminasi lingkungan, dengan cara sebagai berikut: tabung gelas/plastik yang berisi sampel otak pertama dibungkus dengan kapas/bahan lainnya (sebagai pelindung goncangan) dan kemudian tabung tersebut dimasukkan ke dalam kotak yang lebih besar dan kokoh atau kaleng. Kaleng tersebut kemudian dibungkus kapas/kain secukupnya dan dimasukkan ke dalam kotak yang lebih besar (boks es atau stereoform) yang berisi bahan pendingin (batu es atau es kering/dry ice). Kotak tersebut diberi tanda, selain jenis spesimen, spesies, bahan pengawet, lokasi dan tanggal pengambilan, pengirim dll, juga ditulis “BAHAN BIOLOGIS BERBAHAYA RABIES”. Untuk tabung sampel yang berisi bahan pengawet formalin, boks/kotak penyimpanan tidak perlu dingin. Perlu diperhatikan bahwa tabung, kaleng penyimpan tabung atau boks tidak boleh bocor dan tetap utuh selama dalam pengiriman.